Programme

Chimie dans les cellules – Chimie in vivo
  • Les contraintes pour la chimie intracellulaire : structure, contraintes physicochimiques de la cellule et passage des membranes

  • Chimie bioorthogonale : concepts et réactions

  • Rapporteurs chimiques bioorthogonaux: une source d’inspiration pour la chémobiologie

  • Principaux mécanismes chimiques et physicochimiques impliqués dans la chimie in vivo (profluorescence, molécules cagées, bras auto-immolables et / ou clivables

  • Chimie bioorthogonale dans les organismes vivants pour : 1) l’étude des mécanismes fondamentaux du vivant (metabolic engineering); 2) l’imagerie médicale et le diagnostic (pretargeting); 3) le développement de thérapies innovantes (in vivo drug decaging, drug release, pretargeting radiotherapy, implants, cleavable micelles…)

  • Relargage de molécules actives

Bioconjugaison
  • Bioconjugaison sur les protéines

  • Anticorps (Antibody-Drug Conjugates), Chimie de bioconjugaison, analyse des conjugués, les linkers et payloads, pharmacologie et efficacité

  • Synthèse totale et hemisynthèse de protéines : principe et applications de la native et expressed chemical ligation

  • Acides nucléiques : de la synthèse chimique aux applications pour la chémobiologie – Synthèse chimique des acide nucléiques – Synthèse d’acides nucléiques conjugués, modifications post-synthéiques  – Applications

Outils génétiquement encodés et approches chémogénétiques hybrides
  • Protéines fluorescentes, systèmes de marquage chémogénétiques (SNAP-tag, HALO-tag, CLIP-tag…), incorporation de sondes médiée par des enzymes

  • Incorporation spécifique d’acides aminés non canoniques dans des protéines

Caractérisation de cibles et partenaires biologiques
  • Outils et réactions chimiques permettant d’identifier des (bio)molécules en interactions : cross-linkers, réactions mises en jeux dans les activity/affinity based probes
  • Exemples d’applications, résolution à l’échelle atomique du marquage de la cible.
  • Chimiothèque : criblage phénotypique de la caractérisation d’un hit à la caractérisation de la cible – Exemples d’applications utilisant l’activity/affinity-based biomolecule profiling
  • Petites molécules, identification de cibles, druggable targets, mécanismes d’action

Les intervenants

Christophe Biot

UMR8576 Unité de glycobiologie structurale et fonctionnelle – Université de Lille

Mélanie Etheve Quelquejeu

Université de Paris, UMR8601 Chemistry towards life sciences

Arnaud Gautier

Laboratoire des BioMolécules, UMR 7203 CNRS-ENS-Sorbonne Université Paris

Florence Mahuteau-Betzer

Chimie, modélisation et imagerie pour la biologie UMR9187/U1196, Institut Curie Orsay

Oleg Melnyk

Center for Infection & Immunity of Lille U1019 – UMR 9017 Chemical Biology of Flatworms team. Univ. Lille, CNRS, Inserm, CHU Lille, Institut Pasteur de Lille CIIL

Pierre-Yves Renard

Université de Rouen, UMR 6014 Chimie organique et bioorganique – réactivité et analyse

Raphaël Rodriguez

UMR3666/U1143 – Chimie et Biologie de la Cellule – Chemical Biology of Cancer, Institut Curie, Paris

Sandrine Sagan

Laboratoire des BioMolécules, UMR 7203 CNRS-ENS-Sorbonne Université Paris

Frédéric Taran

Chimie Bioorganique et de Marquage, Institut des sciences du vivant Frédéric Joliot, CEA, Saclay

Boris Vauzeilles

Institut de Chimie des Substances Naturelles, Gif sur Yvette

Sébastien Papot

 IC2MP, Université de Poitiers

Alain Wagner

Laboratoire Bio-Functionnal Chemistry, membre du Laboratoire d’Excellence MEDALIS à la Faculté de Pharmacie de Strasbourg